細胞轉(zhuǎn)染實驗的方法有哪些：1..電穿孔法。通過短暫的高電場電脈沖處理細胞，沿細胞膜的電壓差異會導致細胞膜的暫時穿孔。DNA被認為是穿過孔擴散到細胞內(nèi)的。電脈沖和場強的優(yōu)化對于成功的轉(zhuǎn)染非常重要，因為過高的場強和過長的電脈沖時間會不可逆地傷害細胞膜而裂解細胞。理論上說電穿孔法可用于各種細胞，且不需要另外采購特殊試劑，但需要昂貴的電轉(zhuǎn)儀。此法每次轉(zhuǎn)染需要更多的細胞和DNA，因為細胞的死亡率高。每種細胞電轉(zhuǎn)的條件都需要進行多次優(yōu)化。2.細菌介導的傳染。傳染需要將目的基因克隆到特定的細菌體系中，經(jīng)過包裝細胞的包裝得到改造后的細菌，再進行傳染。優(yōu)點是轉(zhuǎn)染效率特別高，尤其是難以轉(zhuǎn)染的原代細胞、細胞。缺點是構(gòu)建細菌周期長，環(huán)節(jié)多，易出錯，費用也高轉(zhuǎn)染技術(shù)轉(zhuǎn)染是將外源遺傳物質(zhì)導入真核細胞的過程，是細胞和分子生物學研究的重要工具。濟南正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價

細胞轉(zhuǎn)染效率影響因素：1.細胞密度一般來說，當細胞密度達到60%～80%時進行轉(zhuǎn)染可以取得較高的轉(zhuǎn)染效率，過低或過高都會影響轉(zhuǎn)染效果。2.細胞生長狀態(tài)這點非常關(guān)鍵，很多時候傳代次數(shù)太少或者太多都將導致細胞對轉(zhuǎn)染試劑敏感度的改變。因此，為了提高轉(zhuǎn)染效率以及轉(zhuǎn)染穩(wěn)定性、降低細胞毒性，應(yīng)盡量使用適度傳代的細胞系，并在不同次實驗時保持細胞傳代次數(shù)的一致性。3.細胞種類不同細胞種類的細胞在做轉(zhuǎn)染時所需要的轉(zhuǎn)染體系是不同的，不能一種體系用在所有類型細胞的轉(zhuǎn)染實驗長沙正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細胞密度而異。

細胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑：1.準備不足做脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的時候，在開展正式實驗前要多做預(yù)試驗，優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件。優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件包括：脂質(zhì)體的用量、DNA密度、細胞密度、脂質(zhì)體和DNA混合孵育時間等等。2.電壓過大做電轉(zhuǎn)的時候，如果電壓太大，往往會發(fā)生細胞大量死亡的情況。不同的細胞，需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預(yù)實驗，多摸索條件。對于大多數(shù)細胞來說，其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外，就是進行轉(zhuǎn)染的細胞應(yīng)該處于對數(shù)生長期。處于對數(shù)生長期的細胞的抗損傷能力是較強的。細胞濃度應(yīng)該處于5x106到1x107／mL之間。每次轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒應(yīng)該控制在4-6μg，如果﹥10μg，轉(zhuǎn)染效率也較大降低。

細胞轉(zhuǎn)染常用步驟：1.轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在－20攝氏度保存，使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1：1－1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉(zhuǎn)染細胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑，再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24－48小時。操作簡便，對細胞毒性小，轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。

細胞轉(zhuǎn)染的注意事項：細胞狀態(tài)這點非常重要，不要急于求成，一定要讓細胞處于較佳的生長狀態(tài)再做。有文獻說傳代不要超過17代。細胞復蘇后的3代左右時細胞狀態(tài)較好，不要用傳了很多代的細胞去做，細胞的形態(tài)都會發(fā)生變化。大多數(shù)已建立的細胞系都是非整倍體，原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變，總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。這會導致和轉(zhuǎn)染相關(guān)的細胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化，融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉(zhuǎn)染活性。因此，如果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低，可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結(jié)果。或者，幾種來源于經(jīng)篩選，轉(zhuǎn)染效率較高細胞亞系的細胞系現(xiàn)在有售細胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素。無錫細胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家

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細胞轉(zhuǎn)染之PEI轉(zhuǎn)染法：1.細胞分盤：通過胰酶消化收集細胞，用適當?shù)耐耆囵B(yǎng)基以1×105至4×105細胞/cm2的密度平鋪細胞于35mm培養(yǎng)皿上（根據(jù)實驗需要選擇培養(yǎng)皿，使細胞貼壁后所占面積達到培養(yǎng)皿總面積的70－90％）。將細胞置于含5％CO2的37℃溫箱中孵育8-24h，當細胞貼壁完全后即可開始轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染前2h換液（用1.5ml無血清培養(yǎng)基置換舊的培養(yǎng)基）。注：PEI轉(zhuǎn)染法對細胞生長有克制作用，在換液前細胞幾乎不生長，所以需要密度比較大時做轉(zhuǎn)染。2.制備PEI-DNA混合物以35mm組織培養(yǎng)皿用240μl反應(yīng)總體積為例。先在無菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入質(zhì)粒DNA（總量1-3μg為佳），混勻后加入等體積PEI工作液，充分混勻后室溫靜置20-30min，較后將這240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述單層細胞的細胞培養(yǎng)基中，輕輕搖動平皿混勻后置于含5％CO2的37℃溫箱孵育。濟南正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價