如何提高細(xì)胞凍存成功率：無菌！無菌！無菌！要折騰嬌貴的細(xì)胞寶寶，必須要在無菌超凈環(huán)境下才行。超凈工作臺，所有的儀器用品提前滅菌，培養(yǎng)箱什么的定期用酒精擦干凈。微生物污染對細(xì)胞的影響經(jīng)常是開始的時(shí)候沒發(fā)現(xiàn)，發(fā)現(xiàn)的時(shí)候已經(jīng)結(jié)束了，所以千萬要小心。除了操作中的各種小細(xì)節(jié)，還有一個(gè)實(shí)驗(yàn)雷區(qū)，就是配制細(xì)胞凍存液。常見的凍存液配制要遵循培養(yǎng)基+血清+DMSO的成分要求，根據(jù)細(xì)胞實(shí)際判斷成分配比，還建議使用程控儀，注意配制溫度，一個(gè)不小心就又會影響細(xì)胞的存活效果。將要凍存的細(xì)胞懸液，進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)，計(jì)數(shù)后離心。深圳正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家直銷

細(xì)胞凍存秘籍：程序1.凍存前檢查凍存前，細(xì)胞應(yīng)處于指數(shù)生長期，確保細(xì)胞處于健康狀態(tài)。理想情況下，應(yīng)在收獲細(xì)胞前24小時(shí)更換培養(yǎng)基。建議對培養(yǎng)物進(jìn)行微生物污染物，特別是支原體的檢測，并通過適當(dāng)?shù)姆椒?，如STR分析確定其身份。如果在培養(yǎng)過程中使用物品，那么建議在冷凍前1到2周不使用物品，這樣如果出現(xiàn)污染，可以更容易地發(fā)現(xiàn)。2.收集細(xì)胞通常，您可以使用常規(guī)細(xì)胞傳代的實(shí)驗(yàn)程序來收獲細(xì)胞。細(xì)胞收獲期間盡可能溫和操作。本程序推薦的試劑量是針對為75平方厘米（T-75）培養(yǎng)瓶；若使用其他培養(yǎng)容器，請相應(yīng)調(diào)整所用試劑量。A.使用無菌吸管，取出并丟棄培養(yǎng)基。請妥善處置與細(xì)胞接觸的任何材料和溶液。B.用5到10mlCMF-PBS沖洗細(xì)胞，去除所有痕量的血清。C.加入3到5ml的胰酶（在CMF-PBS中），37℃孵育。預(yù)熱酶溶液通常會縮短處理時(shí)間。珠海正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家現(xiàn)貨即用型產(chǎn)品，4℃可穩(wěn)定保存。

細(xì)胞凍存注意事項(xiàng)：1、細(xì)胞貼壁少的問題：教科書中說明凍存細(xì)胞解凍時(shí)1ml細(xì)胞液要加10ml－15m培養(yǎng)液，而在我的試驗(yàn)中的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。2、復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題：試驗(yàn)中我的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中，分裝過多，細(xì)胞濃度過低，不利于細(xì)胞的貼壁。3、加培養(yǎng)基的量放入問題：這個(gè)量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度，從如果你加培養(yǎng)基的太少，那么DMSO的濃度就會比較大，就會影響細(xì)胞生長，從以前的資料來看，DMSO的濃度在小于0.5%的時(shí)候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響，還有一個(gè)說法是1％。所以如果你的凍存液的濃度是10％DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。

無血清快速細(xì)胞凍存液保存條件：儲存于4℃以下。質(zhì)量保障期從產(chǎn)品的生產(chǎn)日期起，為期2年。3個(gè)月以上沒有使用凍存液計(jì)劃時(shí)，盡可能-20℃冷凍保存。為避免重復(fù)凍融過程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低，推薦將產(chǎn)品分裝成小管后，再存放于4℃以下或-20℃冰箱凍存。無血清快速細(xì)胞凍存液細(xì)胞冷凍保存方法：選擇凍存處于對數(shù)生長期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1、按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2、按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。3、取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量，置于離心管中，離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去離心管中的上清液。4、加入適量的無血清型細(xì)胞凍存液于離心管中，使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻，制成細(xì)胞混合液。5、將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6、直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-70℃以下冰箱，長期冷凍保存。7、若研究者需要液氮保存時(shí)，可將完全凍結(jié)的凍存管（放入-70℃以下冰箱后至少一晝夜）移至-196℃液氮罐。無血清細(xì)胞凍存液，2-8℃保存即可，無需再進(jìn)行分裝。

冷凍速率：冷凍速率是指降溫的速度，直接關(guān)系到冷凍效果。冷凍速度不同，細(xì)胞內(nèi)水分向外流動的情況也不相同，不同的冷凍速度既然能使細(xì)胞內(nèi)發(fā)生不同的生理變化，也可以對細(xì)胞產(chǎn)生不同的損傷。超快速玻璃化冷凍對細(xì)胞存活來說是較為理想的冷凍方法。細(xì)胞內(nèi)外呈玻璃化凝固，無冰晶形成或形成很小的冰晶，對細(xì)胞膜和細(xì)胞器不致造成損傷，細(xì)胞也不會在高濃度的溶質(zhì)中長時(shí)間暴露而受損。不同細(xì)胞的較適冷凍速率不同。小鼠骨髓干細(xì)胞、酵母、人紅細(xì)胞的較適冷凍速率分別為1.6℃/min、7℃/min和200℃/min。細(xì)胞與細(xì)胞之間的較適冷凍速率可在1.6℃～300℃/min，故對一種細(xì)胞進(jìn)行冷凍保存之前，首先需要測定其較適冷凍速率，以保證獲得較高的冷凍存活率。可以防止或減少冷凍冰晶對細(xì)胞的損傷作用。無錫無血清細(xì)胞凍存液直銷廠家

程序降溫法使用的凍存液主要配方為培養(yǎng)基、血清、DMSO。深圳正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家直銷

無血清細(xì)胞凍存液：1.逐滴加入5-7mL的預(yù)熱的培養(yǎng)基到15mL的離心管中，加入的同時(shí)輕輕混勻。2.室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。3.吸出培養(yǎng)基，使細(xì)胞沉淀完好無損。使用2mL血清移液管輕輕將細(xì)胞沉淀重懸于1mL的培養(yǎng)基中。小心保持細(xì)胞作為聚集體。4.將0.5mL的細(xì)胞混合物轉(zhuǎn)移到含有培養(yǎng)基的預(yù)包被的6孔板的培養(yǎng)孔中（例如，每個(gè)冷凍管可以鋪板兩個(gè)孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據(jù)凍存的細(xì)胞聚集體數(shù)量進(jìn)行調(diào)整。通常在復(fù)蘇后，要比在常規(guī)的傳代鋪板更多的細(xì)胞聚集體數(shù)量。將培養(yǎng)板放入37°C培養(yǎng)箱?？焖偾昂笞笥业膿u晃培養(yǎng)板數(shù)次，將細(xì)胞聚集體分布均勻。24小時(shí)內(nèi)不要移動培養(yǎng)板。深圳正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液廠家直銷