細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是“慢凍快融”，這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多用二甲基亞砜（DMSO）作為保護(hù)劑，這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性；緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外，減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成，從而減少冰晶對(duì)細(xì)胞的物理?yè)p傷。復(fù)蘇細(xì)胞采用快速融化的方法可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損傷。血清完全細(xì)胞凍存液，通用于各種動(dòng)物細(xì)胞株。特別配方有效提高細(xì)胞存活率和活力。不含動(dòng)物來(lái)源性蛋白，能減少各類病毒、霉菌和支原體等污染，確保凍存細(xì)胞安全。適合用于無(wú)血清培養(yǎng)細(xì)胞和蛋白表達(dá)細(xì)胞。無(wú)血清細(xì)胞凍存液存儲(chǔ)條件：為避免重復(fù)凍融過(guò)程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低。無(wú)血清細(xì)胞凍存液服務(wù)電話

細(xì)胞凍存，我們應(yīng)該注意哪些事項(xiàng)：DMSO快速稀釋會(huì)對(duì)細(xì)胞造成滲透性損傷，使存活率下降50%。對(duì)于DMSO凍存的細(xì)胞，復(fù)蘇后應(yīng)緩慢稀釋成細(xì)胞懸液：1）凍存液：培養(yǎng)基=1:1稀釋成細(xì)胞懸液后離心，然后重懸至培養(yǎng)皿中培養(yǎng)，隔天換液；2）凍存液：培養(yǎng)基=1:10稀釋成細(xì)胞懸液，不用離心，直接放置到培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)2-4小時(shí)后，換液。上述兩種方法都是比較常用的細(xì)胞復(fù)蘇方法，后者更適用于原代細(xì)胞或比較難養(yǎng)的細(xì)胞。液氮內(nèi)的細(xì)胞凍存較長(zhǎng)時(shí)間不要超過(guò)半年，凍存在液氮中的細(xì)胞應(yīng)一段時(shí)間內(nèi)進(jìn)行更替。一個(gè)細(xì)胞系在培養(yǎng)一個(gè)月后，可復(fù)蘇一管新的細(xì)胞確保其質(zhì)量沒(méi)有發(fā)生太大變化，傳代幾次后，再凍存留種。杭州鄭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液無(wú)血清細(xì)胞凍存液存儲(chǔ)條件：儲(chǔ)存于4℃以下,質(zhì)量保障期從產(chǎn)品的生產(chǎn)日期起，為期兩年。

無(wú)血清細(xì)胞凍存液：產(chǎn)品優(yōu)勢(shì)：1.化學(xué)成分明確，無(wú)任何外源蛋白和血清，適用于各類動(dòng)物細(xì)胞株凍存。 2.無(wú)需程序降溫，細(xì)胞復(fù)蘇率90%以上。 3.凍存細(xì)胞可直接存放于-80℃冰箱，穩(wěn)定保存數(shù)年。 4.即用型產(chǎn)品，4℃可穩(wěn)定保存。細(xì)胞凍存：1.收集融合率>90%的對(duì)數(shù)期的貼壁細(xì)胞或者懸浮細(xì)胞于離心管中。2.1000 rmp離心5分鐘，去除離心管中的上清液，收集細(xì)胞沉淀。3.加入適量細(xì)胞凍存液于離心管中，使細(xì)胞濃度為1x106～1x107 cells/mL。頭輕柔吹打混勻,Z成細(xì)胞懸液。4.將離心管中的細(xì)胞懸液分裝與細(xì)胞凍存管中，每管1mL或1.5mL。5.將分裝好的細(xì)胞直接凍存于-80℃冰箱中，可穩(wěn)定凍存數(shù)年。6.如若長(zhǎng)期保存，可在次日轉(zhuǎn)移至液氮中。

細(xì)胞凍存注意事項(xiàng)：離心問(wèn)題：目前主要有兩種見(jiàn)解。一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng)，第二天換液。因?yàn)殡x心的目的是兩個(gè)，去除DMSO，去除死細(xì)胞，這個(gè)是標(biāo)準(zhǔn)流程，但對(duì)一般人來(lái)說(shuō)，把握不好離心轉(zhuǎn)速和時(shí)間，轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少，細(xì)胞就全被扔掉了，轉(zhuǎn)過(guò)了活細(xì)胞會(huì)受壓過(guò)大，死亡。此外在操作過(guò)程中容易污染，所以不推薦。另一種說(shuō)法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜（DMSO），DMSO對(duì)細(xì)胞有一定的毒副作用，所以須將離心后的液體前倒凈，且一定倒干凈。我在試驗(yàn)中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇，結(jié)果無(wú)有異常。無(wú)血清凍存液使用方法：加入適量的細(xì)胞凍存液，重懸細(xì)胞，調(diào)節(jié)密度至1-5x10*↑/mL。

細(xì)胞凍存配制含10%DMSO或甘油的細(xì)胞凍存液，4℃預(yù)冷（新鮮配制的凍存液會(huì)產(chǎn)生大量的熱）；取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞，用細(xì)胞消化酶將單層生長(zhǎng)的細(xì)胞消化下來(lái)；懸浮細(xì)胞則直接將細(xì)胞收集到離心管中；離心1200rpm，6min；去除上清液，逐漸加入適量預(yù)冷的細(xì)胞凍存液，用吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻，計(jì)數(shù)，調(diào)節(jié)凍存液中的細(xì)胞終濃度為5×10e6/ml~1×10e7/ml；將細(xì)胞分裝入凍存管中，每管1~1.5ml；在凍存管上標(biāo)明細(xì)胞的名稱、凍存時(shí)間及操作人員姓名；凍存：標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序?yàn)榻禍厮俾?1~-2℃/min；到達(dá)-80℃時(shí)，則可迅速放入液氮中。根據(jù)凍存方式不同可以分為慢速凍存（程序降溫法）與快速凍存（非程序降溫法）。杭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液平均價(jià)格

當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時(shí)，可增至-5 ℃～-10℃/min。之前。無(wú)血清細(xì)胞凍存液服務(wù)電話

細(xì)胞凍存的注意事項(xiàng)：1、各種細(xì)胞對(duì)凍存速度的要求也不一樣；上皮細(xì)胞和成纖維細(xì)胞耐受性可能大些，骨髓干細(xì)胞－2~－3℃/分鐘合適；胚胎細(xì)胞耐受性較小，不宜太快?？傊谝婚_(kāi)始時(shí)，下降速度不能超過(guò)－10℃/分鐘。2、用什么防護(hù)劑合適和用量多大，要依細(xì)胞而定，初代培養(yǎng)細(xì)胞用DMSO較好，一般細(xì)胞可用甘油；用量以較小為好。有人認(rèn)為人皮膚上皮細(xì)胞貯存在20%-30%甘油中很好。3、原則上細(xì)胞在液氮中可貯存多年，但為妥善起見(jiàn)，凍存一年后，應(yīng)再?gòu)?fù)蘇培養(yǎng)一次，然后再繼續(xù)凍存。4、將凍存管放入液氮容器或從中取出時(shí)，要做好防護(hù)工作，以免凍壞。5、注意自身的安全，對(duì)于來(lái)自人源性或病毒傳染的細(xì)胞株應(yīng)特別小心。操作過(guò)程中，應(yīng)避免引起氣溶膠的產(chǎn)生，小心有毒性試劑例如DMSO，并避免尖銳物品傷人等。無(wú)血清細(xì)胞凍存液服務(wù)電話