細(xì)胞凍存液的作用是什么？滲透性冷凍保護(hù)劑：可以滲透到細(xì)胞內(nèi)，一般是一些小分子物質(zhì)，主要包括甘油、DMSO、乙二醇、丙二醇、乙酰胺、甲醇等。非滲透性冷凍保護(hù)劑：不能滲透到細(xì)胞內(nèi)，一般是些大分子物質(zhì)，主要包括聚乙烯吡咯烷酮（PVP）、蔗糖、聚乙二醇、葡聚糖、白蛋白以及Hetastarch等。冷凍保護(hù)劑同溶液中的水分子結(jié)合，發(fā)生水合作用，弱化水的結(jié)晶過(guò)程使溶液的粘性增加從而減少冰晶的形成，同時(shí)冷凍保護(hù)劑可以通過(guò)在細(xì)胞內(nèi)外維持一定的摩爾濃度，降低細(xì)胞內(nèi)外未結(jié)冰溶液中電解質(zhì)的濃度，使細(xì)胞免受溶質(zhì)的損傷。滲透性冷凍保護(hù)劑的保護(hù)機(jī)制是在細(xì)胞冷凍懸液完全凝固之前，滲透到細(xì)胞內(nèi)，在細(xì)胞內(nèi)外產(chǎn)生一定的摩爾濃度，降低細(xì)胞內(nèi)外未結(jié)冰溶液中電解質(zhì)的濃度，從而保護(hù)細(xì)胞免受高濃度電解質(zhì)的損傷同時(shí)。細(xì)胞內(nèi)水分也不會(huì)過(guò)分外滲，避免了細(xì)胞過(guò)分脫水皺縮。細(xì)胞凍存管一定要保證完全密封，否則在復(fù)蘇過(guò)程中有可能會(huì)炸。鄭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家

無(wú)血清細(xì)胞凍存液的操作規(guī)范：1、培養(yǎng)細(xì)胞至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)晚期，顯微鏡觀察其外觀、形態(tài)、有無(wú)污染等。選擇狀態(tài)良好的細(xì)胞進(jìn)行凍存操作(注：貼壁生長(zhǎng)細(xì)胞，用胰蛋白酶消化并用完全培養(yǎng)基終止消化，進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù);懸浮生長(zhǎng)細(xì)胞，進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù))。2、500～1000g離心5min，棄上清。3、加入適量的細(xì)胞凍存液，重懸細(xì)胞，使細(xì)胞濃度達(dá)到1～10×106/ml，置于凍存管中密閉。4、采取逐級(jí)降溫保存：4℃放置20min，-20℃放置30min，-70℃?過(guò)夜，置于液氮罐中長(zhǎng)期存儲(chǔ)。注意：務(wù)必超凈工作臺(tái)內(nèi)無(wú)菌操作，避免污染。雜交瘤細(xì)胞凍存時(shí)應(yīng)定期復(fù)蘇，以檢查細(xì)胞的活性和分泌抗體的穩(wěn)定性。蕪湖正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液?jiǎn)蝺r(jià)凍存液成分由原來(lái)血清變?yōu)闊o(wú)血清，無(wú)動(dòng)物源成分。

凍存細(xì)胞復(fù)蘇方法：1.從冰箱里取出細(xì)胞冷凍保存管，立即放入37℃振動(dòng)水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細(xì)胞混合液完全融化后，立即加入1 ml細(xì)胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細(xì)胞混合，再將細(xì)胞混合液從凍存管中移入含有9 ml該細(xì)胞培養(yǎng)基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000 rpm，4℃，3~5 min），移去上清液。4.清洗細(xì)胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細(xì)胞培養(yǎng)基，使用移液管緩緩地均勻細(xì)胞混合液。適量地稀釋后，將細(xì)胞混合液移至事先準(zhǔn)備好的培養(yǎng)瓶中。6.鏡檢后，研究者可根據(jù)各自方法和需要來(lái)進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。

細(xì)胞凍存的注意事項(xiàng)：1.為保持細(xì)胞較大存活率，一般都采用慢凍存融的方法。2.凍存物距液氮面越近溫度越低。標(biāo)準(zhǔn)的低凍速度為－1℃~12℃/分鐘，當(dāng)溫度下降達(dá)－25℃時(shí)，下降速度可增至－5~－10℃/分鐘，到－100℃時(shí)則可迅速凍入液氮中。因此要適當(dāng)掌握凍存物下降入液氮中的速度，過(guò)快能影響細(xì)胞內(nèi)水分透出，太慢則促冰晶形成。3.初次凍存者在下降凍存時(shí)，宜先用細(xì)木棒伸入罐中探測(cè)液面位置，然后需用溫度計(jì)與凍存物并行的辦法，以觀測(cè)下降凍存物的速度、凍存物與液氮液面距離和溫度三者關(guān)系，當(dāng)已掌握以上各參數(shù)和凍存技術(shù)熟練后，光按下降時(shí)間和下降距離便可獲理想凍存效果。度保存的無(wú)血清凍存液緩慢加入離心后的細(xì)胞沉淀中。

無(wú)血清細(xì)胞凍存液：1. 逐滴加入5 - 7 mL的預(yù)熱的培養(yǎng)基到15 mL的離心管中，加入的同時(shí)輕輕混勻。2. 室溫（15 - 25°C）以300 x g離心5分鐘。3. 吸出培養(yǎng)基，使細(xì)胞沉淀完好無(wú)損。使用2 mL血清移液管輕輕將細(xì)胞沉淀重懸于1 mL的培養(yǎng)基中。小心保持細(xì)胞作為聚集體。4. 將0.5 mL的細(xì)胞混合物轉(zhuǎn)移到含有培養(yǎng)基的預(yù)包被的6孔板的培養(yǎng)孔中（例如，每個(gè)冷凍管可以鋪板兩個(gè)孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據(jù)凍存的細(xì)胞聚集體數(shù)量進(jìn)行調(diào)整。通常在復(fù)蘇后，要比在常規(guī)的傳代鋪板更多的細(xì)胞聚集體數(shù)量。將培養(yǎng)板放入37°C培養(yǎng)箱?？焖偾昂笞笥业膿u晃培養(yǎng)板數(shù)次，將細(xì)胞聚集體分布均勻。24小時(shí)內(nèi)不要移動(dòng)培養(yǎng)板。無(wú)血清細(xì)胞凍存液的優(yōu)勢(shì)：不含血清，較大減少細(xì)胞污染。蕪湖正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液直銷(xiāo)廠家

無(wú)血清凍存液注意事項(xiàng)：凍存液中含DMSO成分，為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套。鄭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家

細(xì)胞凍存：細(xì)胞培養(yǎng)的傳代及日常維持過(guò)程中，在培養(yǎng)器具、培養(yǎng)液及各種準(zhǔn)備工作方面都需大量的耗費(fèi)，而且細(xì)胞一旦離開(kāi)活的開(kāi)始原代培養(yǎng)，它的各種生物特性都將逐漸發(fā)生變化并隨著傳代次數(shù)的增加和體外環(huán)境條件的變化而不斷有新的變化。因此及時(shí)進(jìn)行細(xì)胞凍存十分必要。細(xì)胞冷凍儲(chǔ)存在-70℃冰箱中可以保存一年之久；細(xì)胞儲(chǔ)存在液氮中，溫度達(dá)-196℃，理論上儲(chǔ)存時(shí)間是無(wú)限的。原理：細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融，實(shí)驗(yàn)證明這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。如今細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑，這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性，加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外，減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法，這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損傷。鄭州無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家